Köpekten Kediye Ksenotransfüzyon: Acil Durumlarda Kedi Transfüzyonu için İlk Tercihimiz Köpek Kanı Olabilir mi?

Acil ve Yoğun Bakım Ünitesi-Beslenme, PatoFizyoloji ve Farmakoloji (NP3) Ünitesi, Oniris, Nantes-Atlantik Veteriner Fakültesi, La Chantrerie, CS 40706, CEDEX 03, 44 307 Nantes, Fransa; nour.abboud@oniris-nantes.fr (N.A.); francoise.roux@oniris-nantes.fr (F.A.R.)
* İlgili kişi: jack.deschamps@oniris-nantes.fr

Özet: Kedi kan gruplarının belirlenebilmesine rağmen, bazı ülkelerde kedilere köpek kanı transfüzyonu hala uygulanmaktadır. Ksenotransfüzyon, etkileri sadece birkaç gün sürse bile oldukça etkilidir ve ciddi yan etkileri yoktur. Kan gruplandırma ihtiyacını ortadan kaldırır ve en önemlisi, başta kedi lösemi virüsü (FeLV) olmak üzere kediler arası enfeksiyöz ajanların bulaşmasını önler. Köpek kanı ile transfüzyon, kedi kanı ile transfüzyondan daha kolay, daha hızlı ve daha az maliyetlidir; donör için daha az rahatsız edicidir. Bu argümanlar ışığında, güncel kılavuzlara göre kedi kanı bulunamadığında, özellikle de donörün FeLV provirüsü için negatif olup olmadığı doğrulanmadığında, bu makalenin yazarları acil durumlarda kedi transfüzyonu için köpek kanı kullanmanın mantıklı olacağını düşünmektedir; bu uygulama hiçbir şey yapmamaktan ve enfeksiyöz bir ajanın aşılanmasından daha iyidir. Allotransfüzyon, acil olmayan durumlarda kronik kompanse aneminin tedavisi olarak veya uygun bir donör (FeLV provirüsü için negatif) mevcutsa tercih edilebilir. Bununla birlikte, ksenotransfüzyondan 2 ila 4 gün sonra, klinik bir değişiklik ve hematokritte belirgin bir düşüş gözlenirse, FeLV provirüsü için negatif olduğu doğrulanan kedi kanıyla transfüzyon yapılmalıdır. Ksenotransfüzyon asla iki kez yapılmamalıdır.

Anahtar kelimeler: transfüzyon; ksenotransfüzyon; köpekten kediye; acil durum; yoğun bakım; kedi; feline

Alıntılamak için: Deschamps, J.-Y.;
Abboud, N.; Roux, F.A. Xenotransfusion
of Blood from Dog to Cat: Should
Canine Blood Be Our First Choice for
Feline Transfusion in Emergency Situations?. Vet. Sci. 2022, 9, 106. https://doi.org/10.3390/ vetsci9030106

Sunum Tarihi: 20 Ocak 2022 Kabul Tarihi: 26 Şubat 2022 Yayınlanma Tarihi: 28 Şubat 2022

Yayıncının Notu: MDPI, makalenin yayınlandığı coğrafi bölgelerdeki yasal hak iddiaları ve kurumsal bağlantılar konusunda tarafsız kalmaktadır.

Telif hakkı: © 2022 yazarlar. Lisans sahibi MDPI, Basel, İsviçre. Bu makale Creative Commons Attribution (CC BY) lisansının hüküm ve koşulları altında dağıtılan açık erişimli bir makaledir (https:// creativecommons.org/licenses/by/ 4.0/).

1. Giriş

Köpek kanının kedilere ksenotransfüzyonunun risklerini ve faydalarını tartışan az sayıda yayın bulunmaktadır. 2013 yılına kadar, 1960’lara kadar uzanan 4 yayında 61 vaka rapor edilmiştir [1-4]. 1968’den 2014’e kadar 46 yıl boyunca hiçbir yayın çıkmamış; uygulamanın modası geçmiş kabul edilmiştir. Sadece Catherine Bovens’in geçmiş başarıları inceleyen derlemesiyle [5], ksenotransfüzyon unutulmaktan kurtulmuş ve yazarlar bir kez daha ara sıra da olsa birkaç vaka rapor etmeye başlamıştır: 2019 itibariyle, iki in vitro çalışmaya ek olarak [6-12] daha sonra 17 vaka yayınlanmıştır [13,14]. Sadece 2020’de 49 vakadan oluşan büyük bir seri daha yayınlandı [15].

Sonuç bölümünde, tüm yazarlar bahsettikleri vakalarda ksenotransfüzyonun faydalarını vurgulamış, ancak bunun istisnai bir seçenek olarak kalması gerektiğine kanaat getirmişlerdir. Le Gal’in raporunda [15], klinisyenler ksenotransfüzyonu yalnızca kedinin kansız 6 saat içinde ölebileceğini düşündüklerinde ve kedi kan ürünlerinin yokluğunda uygulamıştır. Bu sonuç ile yazarlar, tür bariyerine saygının hakim olduğu bilimsel literatürün kalbindeki ampirik pragmatizmi kabul etmeyi denemiştir.

Kedi transfüzyonuna ilişkin güncel kılavuzlar kedi kanı kullanılmasını önermektedir [16-19]. Fakat kedi transfüzyonunda köpek kanının daha sık kullanılması yönünde güçlü argümanlar bulunmaktadır.

2. Acil Durumlarda Ksenotransfüzyon

Köpek donör kullanımı genellikle acil transfüzyon ihtiyacı sebebiyle geçerli sayılmaktadır. Anemik kediler genellikle kritik durumdadır ve acil transfüzyona ihtiyaç duyarlar. Travmatik veya cerrahi sonrası kanama, hemoliz, antikoagülan rodentisit alımı veya daha önce tolere edilen kronik aneminin dekompansasyonuna bağlı anemilerde durum böyledir. Dekompanse olmayan anemik kedilere nadiren kan nakli yapılır. Bu nedenle kedi transfüzyonu genellikle acil durum teşkil eder, bu nedenle ksenotransfüzyon seçeneği mutlaka göz önünde bulundurulmalıdır.

3. Ksenotransfüzyonun Faydaları

Acil tedavilerin gerekçesi, anında etkili olmaları ve yan etki olasılığının bulunmamasıdır. Köpek kanı ile ksenotransfüzyon bu iki kriteri de karşılamaktadır. Ksenotransfüzyon sırasında ölen veya ötenazi uygulanan kediler dışında, raporların çoğu, tıpkı allotransfüzyonda görüldüğü gibi, köpek kanı alan kedilerin klinik durumunda hızlı bir iyileşme (saatler içinde) görüldüğü konusunda hemfikirdir. Kabul etmek gerekir ki, yazarlar iyi sonuçlanan bireysel vakaları yayınlama eğilimindedir, ancak eski vaka serileri yanı sıra Le Gal ve arkadaşlarının [15] geniş serisi de bu genellikle olumlu seyreden durumu desteklemektedir. Bu iyileşme hematokritteki artışla ilişkilidir; Le Gal’in serisinde [15] transfüzyondan önce medyan hematokrit %10 iken, ksenotransfüzyondan 12 saat sonra medyan hematokrit %25’tir. Mortalite oranından nadiren bahsedilmiştir, ancak bahsedildiğinde de primer hastalığa bağlanmıştır, asla ksenotransfüzyonun bir sonucu olarak değerlendirilmemiştir [8,15].

Ksenotransfüzyon insan hastalarda hala uygulandığı zamanlarda, asepsi eksikliğine ve mevcut ilkel kateterizasyon tekniklerine ve antikoagülanların olmamasına rağmen benzer faydalar görülmüştür. 1868 yılında Fransız fizyolog Pierre-Cyprien Oré (1828-1890), kitabında insanlara hayvan kanıyla (kuzu, koyun, dana) yapılan 154 transfüzyonu rapor etmiştir [20]. 64 tedavi, 20 iyileşme, 43 değişmeyen vaka, 1 şüpheli vaka ve 26 ölüm saymıştır. Transfüzyonla bağlantılı sadece tek bir başarısızlık bulmuş ve hemen ardından ölüm meydana gelmiştir. Daha sonra kitabının ikinci baskısında benzer ikinci bir vakayı anlatmış, ancak aynı zamanda üç kez insan kanı transfüzyonu yapılmasına rağmen iyileşme görülmeyen, ancak kuzu kanı transfüzyonuyla hızla iyileşen 42 yaşında anemili bir adamın vakasını da anlatmıştır [21]. O zaman bile Oré, hayvan kanının sınırsız tedarik avantajına sahip olduğunu, her zaman bulunabildiğini ve insan donör için riski ortadan kaldırdığını vurgulamıştır.

Allotransfüzyonun faydalarının yaklaşık 30 gün boyunca devam etmesi beklenmektedir [22]. Köpek kanının kedilere ksenotransfüzyonunun faydaları, köpek eritrositlerinin kedinin antikorları tarafından hızla yok edilmesi nedeniyle sınırlı sürelidir – çoğu çalışmada 4 ila 7 gün ve Le Gal’in serisinde sadece 2 gün [15]- ancak ilk kriz geçtikten sonra, klinik tabloya ve düşen hematokrit değerine bağlı olarak başka bir transfüzyon endikasyonu varsa, mevcut önerilere uygun bir allotransfüzyon yine de verilebilir. Yakın zamanda yayınlanan klinik vakalar her zaman ikinci bir transfüzyon ihtiyacı rapor etmemektedir. Son raporlarda, 36/56 vakada (%64) sadece tek bir transfüzyona ihtiyaç duyulmuştur [6-11,15,23]; 20/56 vakada (%36) bu kez intraspesifik olmak üzere ikinci bir transfüzyona ihtiyaç duyulmuştur: Euler tarafından bildirilen ikinci kedide [9], Klainbart’ın serisindeki 5/9 kedide [8] ve Le Gal’in serisindeki 14/39 kedide [15]. Dolayısıyla, köpek kanının hızlı hemolizine rağmen, vakaların sadece üçte birinde dördüncü gün civarında ikinci bir transfüzyon gerekli olmuştur.

4. Ksenotransfüzyonda Ciddi Yan Etkilerin Olmaması

Bugüne kadar hiçbir ciddi transfüzyon reaksiyonu bildirilmemiştir. Nadiren küçük acil ikincil etkiler görülmüştür (hipertermi, taşipne) [3,15], bunlar allotransfüzyonlarda gözlenenlerden farklı veya daha sık değildir ve uyumlu veya uyumsuz çapraz eşleşmesi olan kediler arasında önemli bir fark yoktur [15]. Le Gal ve arkadaşları [15] ksenotransfüzyon serilerinde sadece altı (%12) önemsiz febril reaksiyon vakası görmüş ve başka akut transfüzyon reaksiyonu görülmemiştir; ksenotransfüzyondan önce paketlenmiş kedi kanından kırmızı kan hücresi transfüzyonu yapılan dokuz kedide (%18) herhangi bir reaksiyon bildirilmemiştir.

Dördüncü gün itibariyle, köpek eritrositlerinin hızlı hemolizi nedeniyle, muhtemelen ikterin eşlik ettiği hiperbilirubinemi [15,23] bazen klinik sonuç olmaksızın bildirilmektedir. Genellikle ikinci bir ksenotransfüzyonun denendiği daha eski vakalar (Hessler’in serisinde [1] 20/22 vaka), köpek kanıyla ikinci bir transfüzyonun mutlak kontrendikasyonunu göstermektedir ki bu da neredeyse her zaman bu süreden sonraki birkaç dakika veya saat içinde ölümcül olmaktadır. Her prosedürde olduğu gibi, özellikle de güncel kılavuzlarda yer almayan bir prosedürde, hayvan sahiplerinin onayı alınmalıdır. Sahipler, kedilerinin köpek kanı aldığı konusunda açıkça bilgilendirilmelidir, böylece başka bir transfüzyona ihtiyaç duyulursa bu durumu veterinerlerine bildirebilirler. Le Gal’in serisinde [15], iletişime geçilen tüm sahipler kedilerinin ksenotransfüzyon aldığını hatırlamıştır.

5. Kan Alma Kolaylığı: Köpek vs. Kedi

Köpekler kedilerden daha uysaldır. Donör kediler genellikle sakinleştirilmeli, hatta bazen anestezi uygulanmalıdır; kardiyomiyopatiler kedilerde nadir değildir ve anestezi tehlikeli olabilir. Köpekler daha işbirlikçidir ve özellikle kediler için gereken küçük hacimlerde anestezi, hatta sedasyon gerektirmez. Damarlarının büyüklüğü, büyük köpeklerde sefalik venlerden minimum kısıtlama ile kan alınmasına izin verirken, kedilerde kan alma işlemi daha fazla fiziksel veya kimyasal kısıtlama gerektiren juguler venden yapılmalıdır.

6. Gereken Kan Volümü

Kedi transfüzyonu için toplanan tipik kan volümü 30 ila 80 mL’dir (Le Gal’in serisinde [15], transfüze edilen medyan volüm 14,6 mL/kg idi). Bu, orta ve büyük köpekler için çok da önemli bir kayıp değildir: 60 mL tam kan, bir Labrador’un kan volümünün sadece yaklaşık %2’sini oluştururken, donör bir kedinin kan volümünün %25-30’unu temsil etmektedir. Kediler için bazen büyük volümlerde kan gerekir [24] ve ksenotransfüzyon ihtiyacı tek bir köpek tarafından karşılanabilirken, allotransfüzyon için birden fazla kedi donörü gerekir ve bu da alınması gereken önlemleri artırır. Bununla birlikte, büyük volümlerde köpek kanı kullanımı henüz dokümante edilmemiştir ve muhtemelen riskler daha yüksek olabilir. Le Gal’in serisinde [15], transfüze edilen volüm 28 mL/kg’a kadar çıkmıştır; böyle bir taze tam kan volümü tek bir kediden alınamaz ve bu nedenle kedi kanı bankasına erişim veya allotransfüzyona ek olarak nihai bir ksenotransfüzyona başvurmak gerekir. Aynı argümanlarla, büyük volümlerde kan bağışlama kabiliyetleri nedeniyle, sığırlar da keçiler için kan kaynağı olarak düşünülmüştür [25].

7. Doğal Antikorlar

Kedilerin çoğu iki kan grubundan birine aittir: A tipi veya B tipi [19]. Kediler, türlerinin diğer kan gruplarının eritrositlerine karşı doğal antikorlara sahiptir: A tipi kediler anti-B tipi antikorlara sahiptir ve B tipi kediler A tipine karşı çok sayıda antikora sahiptir [19]. Uyumsuz kanla yapılan allotransfüzyon, en azından hemolize (B tipi donör ve A tipi alıcı durumunda) veya en kötü ihtimalle birkaç dakika içinde ölüme (A tipi donör ve B tipi alıcı durumunda) neden olur [26]. Dolayısıyla kedilerde, köpekten köpeğe transfüzyonlarda olduğu gibi, uyumluluğu doğrulamadan tek bir transfüzyon gerçekleştirmek mümkün değildir; bu nedenle bir kedi, önceden kan tiplemesi yapılmadan ve ideal olarak çapraz eşleştirme yapılmadan transfüze edilmemelidir. Köpek kanının kullanılması kedi alıcısını bu tehlikelere maruz bırakmaz. Çoğu yazar, kedilerde köpek eritrosit antijenlerine (ve tersi) karşı doğal antikor bulunmadığı konusunda hemfikirdir ve bu nedenle köpek kanının değerini desteklemektedir. Bu görüş, transfüzyondan önce elde edilen uyumluluk testlerine ve gözlenen anafilaktik reaksiyonların olmayışına dayanmaktadır. Bununla birlikte, üç yayın bu tür antikorların varlığını ortaya koymuştur [9,13,14]; bu çalışmalarda kedilerin hiçbiri majör veya minör çapraz eşleşmede tamamen negatif çıkmamıştır. Yazarlar, teorik olarak orta ila şiddetli reaksiyon riskinin yüksek olduğu sonucuna varmıştır. Yayınlanan 127 vakada bu risk in vivo olarak hiç gözlemlenmemiştir. Le Gal’in serisinde [15], majör çapraz eşleşmeler 29 vakanın 20’sinde (%69) ve minör çapraz eşleşmeler 26 vakanın 8’inde (%31) uyumsuzdur, ancak ciddi ve ani bir reaksiyon gözlenmemiştir ve donörler ile alıcılar arasındaki uyumsuzluklar gecikmiş hemolitik transfüzyon reaksiyonunun gelişeceğini öngörmemiştir.

Kedi alıcısının kan grubunu belirleme yeteneğinden mahrum olunduğunda (kritik bir acil durumda [10] veya test sonuçlarının çelişkili olması durumunda [9]), köpek kanıyla transfüzyon reaksiyonu riski, rastgele seçilen bir kediden alınan kanın kullanılmasıyla ortaya çıkan riskten çok daha düşüktür. Köpek kanı ile ksenotransfüzyon durumunda, kan grubu bilinmese bile bir köpek seçilebilir. Le Gal’in serisinde [15], 49 kedinin 35’ine (%71) köpek eritrosit antijeni (DEA)-1-pozitif paketlenmiş kırmızı kan hücreleri ve 14’üne (%29) DEA-1-negatif paketlenmiş kırmızı kan hücreleri verilmiştir.

8. Kan Grubu B’nin Nadir Bulunması

Kedi kan gruplarının yaygınlığı ülkeden ülkeye değişmektedir; ortalama olarak kedilerin %85’i A grubuna, %15’i ise B grubuna aittir [19,27]. Fransa gibi B tipi prevalansının %10 olduğu bir ülkede [27], alıcı B tipine aitse, teorik olarak, uyumlu bir donör bulmak için ortalama 10 kediyi rastgele test etmek gerekecektir. Kedi kanı transfüzyonu yapan bir veterinerin elinde kan vermeye müsait (sadece ev içinde yaşayan) B tipi kedilerden oluşan bir liste bulunmalıdır; bu kediler her zaman ulaşılabilir olmalı veya bir kan bankasına düzenli bağışta bulunmalıdır.

Benzer bir durum, tutsak olsun ya da olmasın, yabani türler için de geçerlidir. Biyolojileri hakkında bilgi eksikliği ve aynı türden bir donör bulmanın imkansızlığı, yakın akraba olan evcil türlerden alınan kanın kullanıldığı başarılı ksenotransfüzyon uygulamalarına öncülük etmiştir [28,29]. Evcil köpeklerden alınan kanın ksenotransfüzyonu, evcil olmayan tutsak vahşi köpekler için düşünülebilir [30]. Ksenotransfüzyonun faydaları ve yan etkilerinin olmaması, kan toplama ve depolamanın sorunlu olduğu gelincik gibi evcil hayvanlarda da araştırılmalıdır [31,32].

9. Kedi Kan Bankalarının Azlığı ve Bunlarla İlgili Sorunlar

Piyasada kedilerde kullanılabilecek sentetik herhangi bir kan ürünü bulunmamaktadır; ticari olarak hazırlanmış sığır hemoglobin solüsyonu olan Oxyglobin® şu anda mevcut değildir.

Bir kedi kan bankası kurmak, kan grubu bilinen ve başlıca kedi enfeksiyon etkenleri açısından güncel durumu bilinen kedilerden alınacak kana anında erişim imkanı sağlar, ancak bu bir klinik için büyük bir çalışma gerektirir. Bazı üniversite merkezlerinde ve büyük muayenehanelerde, acil durumlarda çağrılabilecek tipte potansiyel bağışçı listeleri bulunmaktadır, böylece köpek transfüzyonunun acil durum sonrası tahribatından kaçınılmış olur. Temasa geçilebilecek tiplendirilmiş kedi donörlerinin bir listesini tutmak önemli bir seçenektir, ancak donörü acil bir durumda belirlenen süre zarfında kliniğe getirmek her zaman mümkün değildir; ksenotransfüzyondan sonra daha fazla transfüzyon yapılması gerekiyorsa bu mükemmel bir seçenektir.

Le Gal’in serisinde [15], klinisyenler yalnızca kedi kan ürünlerinin yokluğunda ksenotransfüzyon yapmıştır; vakalar Birleşik Krallık’taki iki büyük üniversite hastanesinden alınmıştır ve bu da bir kedi kan bankası kurmanın zorluğunu ortaya koymaktadır. Daha küçük ölçekli kuruluşların nadiren ihtiyaç duydukları için kan bankacılığından vazgeçmeleri anlaşılabilir bir durumdur. Veteriner kliniğinde köpek kan bankası varsa ancak kedi kanı mevcut değilse, köpek tam kanı yerine paketlenmiş kırmızı kan hücrelerinin kullanılması tercih edilebilir; Le Gal’in serisinde [15] tüm kedilere paketlenmiş kırmızı kan hücreleri verilmiştir.

Köpek kan bankasına sahip tesislerin kedi kan bankasına sahip olması gerekmez: kediler daha az işbirlikçi bağışçılardır ve köpeklerde olduğu gibi kedilerden kolaylıkla bağış alınamaz. Aslında, şu anda mevcut olan toplama torbaları kedi kanı toplamak için uygun değildir. İnsan kanı için tasarlanan ve köpekler için kullanılan 250 mL’lik kan alma torbalarının iğnesi kediler için çok büyüktür ve şah damarına zarar verme riski vardır. Güvenliği artırmak için yarı kapalı bir sistem kullanmak mümkündür [33]. Kediler için tasarlanan torbalar daha küçük bir iğneye sahiptir, ancak antikoagülan içermediklerinden, bir insan torbasından sitrat fosfat dekstroz asidi (CPDA) çekmek, ardından donör kedinin kanını bir kelebek kateter ile toplamak ve ardından tekrar başka bir torbaya enjekte etmek gerekir [16,19,34]. Toplama sistemi kapalı olmadığından, kullanım sırasında kontaminasyon riski artmaktadır. Aspirasyon ve enjeksiyon kan kalitesini değiştirir [35]. Toplama tekniklerinin karşılaştırılabilir olduğu gelinciklerde yapılan bir çalışmada, kanın toplandıktan sonraki 7 gün içinde kullanılması gerektiği gösterilmiştir [31].

Bir kan bankasının faydalı olabilmesi için yeterli miktarda kana sahip olması gerekir; bu da tahmini ihtiyaçlardan daha fazla stok bulundurulması anlamına gelir. Belli bir miktar kan ürünü kaçınılmaz olarak kullanılmaz hale gelecektir. Kan toplama işlemi büyük bir çalışma ve masrafgerektirmekte ve bağışçılar gereksiz yere travmaya maruz kalmaktadır.

10. Enfeksiyon Riski

10.1. Klasik Enfeksiyon Riskleri

Retrovirüs bulaşma riski, kan nakillerinde önemli bir endişe kaynağıdır. Fransa’da 1980’lerde AIDS virüsü ile kontamine olmuş insan kanı vakası riskin büyüklüğünü göstermektedir. İnsanlarda ksenotransfüzyon düşünüldüğünde, domuz endojen retrovirüslerinden (PERV’ler) DNA dizilerinin rekombinasyon riski, klinik deneylere yönelik başlıca etik itirazlardan birini oluşturmaktadır [36]. Kediler iki retrovirüs taşıyabilir: feline lösemi virüsü (FeLV) ve feline immün yetmezlik virüsü (FIV). Kedi kanı kullanılacaksa donörün enfeksiyon açısından test edilmesi gerekir; mevcut kurum içi testlerin hassasiyeti çok yüksektir [37].

Köpekler FeLV veya FIV retrovirüslerini taşımazlar ve bu nedenle test edilmeleri gerekmez. Aynı şekilde, köpekler, kan yaymalarında teşhis edilmesi bazen zor olan ve teşhis için altın standardın (PCR) kullanılamadığı durumlarda kedi mikoplazmasını bulaştıramaz.

Enfeksiyon riski nedeniyle, kedi kanı bağışçıları pirelere karşı yeterince tedavi edilmiş ve sadece kapalı alanda yaşayan kedilerden seçilmelidir [16,17,19,34]; bağışçının köpek olması durumunda bu önlemlerin alınmasına gerek yoktur.

10.2. Yeterince Dikkate Alınmayan Enfeksiyon Riskleri

FeLV ile ilgili olarak, p27 antijeninin tespiti, viremik kedilerden bağış yapılmasını önlemektedir. Bununla birlikte, vireminin olmaması ve kemik iliği içinde bir virüsün varlığını sürdürmesi ile karakterize latent bir enfeksiyon olasılığı da vardır [38]. Gerileyen bir enfeksiyondan muzdarip kediler FeLV’ye karşı hücresel ve humoral bir bağışıklık tepkisi verir ve birkaç hafta içinde vireminin üstesinden gelirler; p27 antijeni için negatif test yaparlar ancak yaşamlarının geri kalanında PCR ile tespit edilebilen provirüs taşıyıcısı olarak kalırlar [39]. Provirüs için pozitif ve p27 antijeni için negatif olan kedilerin prevalansı, çalışılan popülasyona göre değişir ve %10 kadar yüksek olabilir [39,40]. Bu provirüs pozitif kediler genellikle FeLV’ye karşı kalıcı bir bağışıklığa sahiptir, ancak FeLV ile ilişkili hastalığın gelişmesiyle enfeksiyonun yeniden aktive olduğu birçok kez belgelenmiştir [38,41-43].

2015’te yayınlanan deneysel bir çalışmada, Nesina ve arkadaşları 10 patojen içermeyen (SPF) yavru kediye, p27-negatif olan ancak FeLV provirüsünün taşıyıcısı olan kedilerden alınan 10 mL kanı nakletmiştir [44]. Bir kedide FeLV-C ile ilişkili rejeneratif olmayan anemi, diğer dördündeise biri sekonder lenfoblastik lösemi olmak üzere T hücreli lenfoma gelişmiştir. Böylece transfüzyon yapılan kedilerin %50’sinde ölümcül hastalığa neden olmuştur. Görünüşte sağlıklı olan 3 donör kediden 1’i T-hücreli lenfoma nedeniyle ölmüştür. Bu çalışma, gerileyen enfeksiyonu olan kedilerde proviral DNA’nın uzun yıllar boyunca replike olma yeteneğini koruyabileceğini göstermektedir [42,43]. Provirüs taşıyıcılarının kan bağışı dışında bırakılması için uygun PCR testlerinin yapılması önerilmektedir [44].

2020 yılına kadar, kedilerde transfüzyonla ilgili tavsiyeler [16,17] Nesina’nın 2015 yılında yayınlanan çalışmasından bahsetmemiş, ancak FeLV provirüsünün bulaşma riskleri konusunda uyarıda bulunmuştur. Kedi transfüzyonlarına ilişkin tavsiyelerin uygunluğunu inceleyen 2018’de yayınlanan bir çalışmada, 31 kayıtlı kediden 1’inde FeLV provirüs testi pozitif çıkmıştır, ancak mevcut tavsiyelere göre bağış dışı bırakılmamıştır [45]. 2021 yılında, Mesa-Sanchez ve arkadaşları tarafından İspanya ve Portekiz’de yürütülen retrospektif bir çalışmada, kan bağışçısı olmaya uygun, sağlıklı, sahipli, ev kedilerinden oluşan geniş bir popülasyonda subklinik enfeksiyöz ajanların prevalansı belirlenmiştir [46]. Toplam %8,1’inde (414/5105) kan transfüzyonu yoluyla bulaşabilen en az bir subklinik enfeksiyöz ajan vardı; %1,5’i FelV antijenleri, %2,9’u FIV’e karşı antikorlar, %3,7’si hemoplazmalar ve %0,2’si Bartonella spp için pozitifti; FelV provirüsü için test edilen 173 FeLV ve FIV SNAP-negatif kediden 9’u (%5,2) pozitifti.

Nesina ve arkadaşları tarafından yapılan çalışma, kedilerde allotransfüzyon uygulamasının sorgulanması gerektiğini ortaya koymaktadır; FeLV provirüsünü tespit edebilen PCR testi kurum içi kullanım için mevcut olmadığından, yalnızca daha önce PCR ile test edilmiş ve hiç dışarı çıkmamış kediler donör olarak kullanılmalıdır. Sadece kan grubuna ve FeLV ve FIV serolojik durumuna (ELISA testi) dayanarak dışarıdan seçilen hiçbir kedi donör olarak kullanılmamalıdır; FeLV provirüsü için biyomoleküler (PCR) tarama gereklidir.

Tür bariyeri aşıldığı ve enfeksiyon etkenlerinin çoğu türe özgü olduğu için, bir enfeksiyon etkeninin köpek kanından kediye bulaşma riski çok düşüktür; öte yandan, bir enfeksiyon etkeninin (ve bununla ilişkili hastalığın) kediden kediye bulaşma riski ise son derece önemlidir.

11. Mali Kısıtlamalar

Kedilerde allotransfüzyon, köpek kanıyla yapılan ksenotransfüzyondan daha maliyetlidir: sedasyon veya anestezi, olası ekokardiyografi, alıcının ve donörün kanının tiplendirilmesi (ve ilki uyumlu değilse muhtemelen birkaç donörün), FeLV ve FIV enfeksiyonları için tarama, M. haemofelis aramak için kan yaymaları, FeLV provirüsünün taşıyıcılarını tespit etmek için PCR. Köpek kanı kullanıldığında 200 EUR (220 USD) civarındaki bu masraflar gereksizdir.

12. Prosedürün Sakıncaları

Allotransfüzyonun kedi için zaman ve harcanan efor açısından sakıncalı olması, birçok veteriner hekimin hala kritik öneme sahip transfüzyonlardan vazgeçmesine neden olmaktadır. Tür bariyerine saygı duymak, bazı kedilerin hayat kurtarıcı bir prosedürden mahrum kalmasına neden olmaktadır. Donörün köpek olması durumunda kedi transfüzyonu ile ilgili kısıtlamaların çoğu ortadan kalkmaktadır (anestezi, hem donörün hem de alıcının kan tiplemesi, retrovirüs tespiti, kan filmleri).

13. Sonuç

İki argüman, kedilere transfüzyon için kedi kanı kullanılmasını öneren mevcut görüşü desteklemektedir:

(1) Uzun süredir inanılanın aksine, kedinin köpek eritrositlerine karşı doğal antikorları vardır ve bu nedenle potansiyel olarak ciddi transfüzyon reaksiyonu riski vardır.

(2)

(1) (2)

–

Ksenotransfüzyonun faydaları geçicidir: allotransfüzyonda 30 güne kadar olan süreye kıyasla yaklaşık 2 ila 4 gündür.

Bu argümanlara şu şekilde karşı çıkılabilir:

Transfüzyon reaksiyonu riski sadece teoriktir; bugüne kadar yayınlanmış 127 vakada bu tür bir reaksiyon bildirilmemiştir.
Ksenotransfüzyonun etkilerinin süresi genellikle ikinci bir transfüzyona gerek kalmadan durumu tersine çevirmek için yeterlidir [6-11,15,23]. Anemi 2 ila 4 gün sonra tekrar ortaya çıkarsa, önceki ksenotransfüzyon sonraki allotransfüzyon uygulamasının risklerini artırmadığından, mevcut acil durum ortamı dışında geleneksel kılavuzlara uygun olarak hastaya allotransfüzyon uygulanabilir.

Kedi kanı kullanımı, her şeyden önce, tür bariyerini aşma yasağı dogmasına dayanmaktadır. Kedi transfüzyonu için köpek kanı kullanımını destekleyen çok sayıda argüman bulunmaktadır:

Kedilere köpek kanı transfüzyonu genellikle faydalıdır.

–
azından böyle bir reaksiyon hiç bildirilmemiştir.

Köpek kanının kedilere transfüzyonu ciddi transfüzyon reaksiyonlarına neden olmaz; en

– Köpek kanının kedilere transfüzyonu, minör bile olsa hiçbir klinik soruna neden olmaz.
– Kediler arasında donör ve alıcının kan grubunun belirlenmesi zorunludur; donör bir köpek ise böyle bir gereklilik yoktur.

– Kedi kan gruplarından biri olan B tipi, kediler arasında nispeten nadirdir ve bu tür kediler için donör bulmak bazen zordur.

– Kediler arasındaki uyumluluk bazen sorunludur [9].
– Köpeklerden kan almak daha kolaydır; kediler bazen sakinleştirilmeli, hatta anestezi uygulanmalıdır.
– Köpek kanı kapalı bir sistemde toplanabilir, bu da kedide şu anda zordur.
– Kedi kanı aspire edilirken köpek kanı yerçekimiyle toplanabilir, bu da ürünün kalitesini etkiler.
– Çekilen volümler (yaklaşık 60 mL) bir köpek için küçük iken bir kedi için oldukça büyüktür.
– Köpeklerden kedilere retrovirüs veya mikoplazma bulaşma riski yoktur.
– Antijen p27 için FeLV testi negatif çıkan bir kedi, FeLV provirüsünü bulaştırarak alıcıda lenfomaya neden olabilir [44]; donör bir köpek ise bu risk ortadan kalkar.
– Bir kedi kan bankasının kurulması, sık sık kedi transfüzyonuna ihtiyaç duymayan bir kuruluş için çok büyük bir uğraştır.
– Acil durumlar her zaman alıcının kan grubunun belirlenmesine izin vermeyebilir [10,15].
– Donör bir köpek ise transfüzyona karşı daha az kısıtlama bulunmaktadır.
– Donörün köpek olması durumunda transfüzyon maliyeti çok daha düşüktür.
– Daha az kısıtlama olduğundan, köpek kanı ile transfüzyon daha hızlı tamamlanır ve bu da acil durumlarda önemlidir.
– Veteriner hekimler, donörün kedi olması durumunda prosedürün zahmetli olması nedeniyle hayat kurtarıcı nitelik taşıyan bir transfüzyondan vazgeçebilir.

Bu argümanlar ışığında, güncel kılavuzlara göre toplanan kedi kanı mevcut olmadığında, özellikle de donörün FeLV provirüsü için negatif olup olmadığı doğrulanmadığında, yazarlar acil durumlarda kedi transfüzyonu için köpek kanı kullanmanın mantıklı olduğunu düşünmektedir; bu uygulama hiçbir şey yapmamaya ve enfeksiyöz bir ajanın inokülasyonuna göre daha mantıklıdır. Allotransfüzyon, acil olmayan durumlarda kronik kompanse aneminin tedavisi olarak veya uygun bir donör (FeLV provirüsü için negatif) mevcutsa tercih edilmektedir. Ksenotransfüzyondan 2 ila 4 gün sonra, eğer hastada klinik bir değişiklik ve hematokrit değerinde belirgin bir düşüş gözlenirse, FeLV provirüsü açısından negatif olduğu doğrulanmış kedi kanıyla transfüzyon yapılmalıdır. Ksenotransfüzyon asla iki kez yapılmamalıdır.

Katkıda bulunan yazarlar: J.-Y.D. ve F.A.R. bu makalenin yazımına katkıda bulunmuştur. N.A. kurumda gerçekleştirilen ksenotransfüzyonları analiz ederek bu makalenin yazarlarının argümanlarını geliştirmelerine yardımcı olmuştur. Tüm yazarlar makalenin yayınlanan versiyonunu okumuş ve kabul etmiştir.

Finansman: Bu araştırma herhangi bir dış finansman almamıştır. Kurul Beyanı: Mevcut değil. Bilgilendirilmiş Onam Beyanı: Mevcut değil.

Veri Erişilebilirlik Beyanı: Mevcut değil.
Çıkar Çatışması Beyanı: Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Kaynakça

Hessler, J.; Davis, L.E.; Dale, H.E. Effect of repeated transfusions of dog blood to cats. Small. Anim. Clin. 1962, 2,684–687.
Clark, C.H.; Kiesel, G.K. Longevity of Red Blood Cells in Interspecies Transfusion. J. Am. Vet. Med. Assoc. 1963, 143, 400–401. [PubMed]
René, J.G.F. De L’hétéro-Transfusion Sanguine Chez le Chat [Blood Hetero-Transfusion in the Cat]. DVM Thesis, Ecole Nationale Vétérinaire
de Toulouse, Toulouse, France, 1968. (In French)
Lautié, R.; Coulon, J.; Geral, M.F.; Cazieux, A.; Griess, F. L’hétéro-transfusion sanguine chez le chat—Etude immunologique— Etude
clinique [Blood hetero-transfusion on cat. Immunological study—Clinical study]. Rev. Med. Vet. 1969, 32, 311–323. (In French)
Bovens, C.; Gruffydd-Jones, T. Xenotransfusion with canine blood in the feline species: Review of the literature. J. Feline Med. Surg. 2013,
15, 62–67. [CrossRef]
Sarpataki, O.; Bedecean, I.; Codea, R.; Bel, L.; Catana, R.; Marcus, I.; Sevastre, B. Blood transfusion with canine blood in two cats with hypovolemic anemia. Bull. USAMV Vet. Med. 2014, 71, 513–514. [CrossRef]
Weingram, T. Xenotransfusion of canine blood to a cat. Isr. J. Vet. Med. 2014, 69, 50–52.
1. Klainbart, S.; Oron, L.; Lenchner, I.; Aroch, I.; Kelmer, E. Canine-to-feline xenotransfusions: A case series of 9 clinical cases. In Proceedings
  of the International Veterinary Emergency and Critical Care Society, Washington DC, USA, 19–22 September 2015.
2. Euler, C.C.; Raj, K.; Mizukami, K.; Murray, L.; Chen, C.Y.; Mackin, A.; Giger, U. Xenotransfusion of anemic cats with blood compatibility
  issues: Pre- and posttransfusion laboratory diagnostic and cross-matching studies. Vet. Clin. Pathol. 2016, 45, 244–253. [CrossRef]
3. Oron, L.; Bruchim, Y.; Klainbart, S.; Kelmer, E. Ultrasound-guided intracardiac xenotransfusion of canine packed red blood cells and epinephrine to the left ventricle of a severely anemic cat during cardiopulmonary resuscitation. J. Vet. Emerg. Crit. Care 2017, 27, 218–223.
  [CrossRef] [PubMed]
4. Rajnat, K.; Baranidharan, G.R.; Senthil, N.R. Xenotransfusion in a Cat—A successful emergency management. In Proceedings of the
  TANUVAS 9th Clinical Case Conference on Farm and Companion Animal Practice for Veterinary Students, Chennai, India, 3–4 August 2017;
  Madras Veterinary College, Indian Agricultural Research Institute: New Delhi, India, 2017; p. 23.
5. Dupont, J.; Serteyn, D.; Sandersen, C. Life-Threatening Hemorrhage during Patent Ductus Arteriosus Ligation in a Cat: Xeno- transfusion
  with Canine Blood. Front. Vet. Sci. 2020, 7, 133. [CrossRef]
6. Wilkinson, M.; McClure, I.; Kaufman, P. An in-vitro assessment of canine to feline red blood cell xenotransfusion. In Proceedings of the
  ACVIM Forum Research Abstract Program Denver, Denver, CO, USA, 9–10 June2016.
7. Priolo, V.; Masucci, M.; Spada, E.; Proverbio, D.; Pennisi, M.G. Naturally occurring antibodies in cats against dog erythrocyte antigens and
  vice versa. J. Feline Med. Surg. 2018, 20, 690–695. [CrossRef]
8. Le Gal, A.; Thomas, E.K.; Humm, K.R. Xenotransfusion of canine blood to cats: A review of 49 cases and their outcome. J. Small Anim.
  Pract. 2020, 61, 156–162. [CrossRef]
9. Pennisi, M.G.; Hartmann, K.; Addie, D.D.; Lutz, H.; Gruffydd-Jones, T.; Boucraut-Baralon, C.; Egberink, H.; Frymus, T.; Horzinek, M.C.; Hosie,
  M.J.; et al. Blood transfusion in cats: ABCD guidelines for minimising risks of infectious iatrogenic complications.
  J. Feline Med. Surg. 2015, 17, 588–593. [CrossRef]
10. Wardrop, K.J.; Birkenheuer, A.; Blais, M.C.; Callan, M.B.; Kohn, B.; Lappin, M.R.; Sykes, J. Update on Canine and Feline Blood Donor
  Screening for Blood-Borne Pathogens. J. Vet. Intern. Med. 2016, 30, 15–35. [CrossRef]
11. Davidow, E.B.; Blois, S.L.; Goy-Thollot, I.; Harris, L.; Humm, K.; Musulin, S.; Nash, K.J.; Odunayo, A.; Sharp, C.R.; Spada, E.; et al. Association
  of Veterinary Hematology and Transfusion Medicine (AVHTM) Transfusion Reaction Small Animal Consensus Statement (TRACS) Part 2:
  Prevention and monitoring. J. Vet. Emerg. Crit. Care 2021, 31, 167–188. [CrossRef] [PubMed]
12. Taylor, S.; Spada, E.; Callan, M.B.; Korman, R.; Leister, E.; Steagall, P.; Lobetti, R.; Seth, M.; Tasker, S. 2021 ISFM Consensus Guidelines on
  the Collection and Administration of Blood and Blood Products in Cats. J. Feline Med. Surg. 2021, 23, 410–432. [CrossRef] [PubMed]
13. Oré, P.C. Études Historiques et Physiologiques sur la Transfusion du Sang [Historical and Physiological Study on Blood Transfusion]; J.-B.
  Ballière et Fils: Paris, France, 1868; 192p. (In French)
14. Oré, P.C. Deux observations de transfusion avec le sang humain et le sang d’agneau [Two transfusion observations with human blood and
  lamb blood]. Gaz. Med. Bordx. 1876. (In French)
15. Marion, R.S.; Smith, J.E. Survival of erythrocytes after autologous and allogeneic transfusion in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 1983,
  183, 1437–1439. [PubMed]
16. Gowan, R. Canine blood transfusion in a cat with erythroid leukemia. In Proceedings of the Australian College of Veterinary Scientists
  Science Week, Surfer’s Paradise, Australia, 2–4 July 2004; pp. 29–30.
17. Roux, F.A.; Deschamps, J.Y.; Blais, M.C.; Welsh, D.M.; Delaforcade-Buress, A.M.; Rozanski, E.A. Multiple red cell transfusions in 27 cats
  (2003–2006): Indications, complications and outcomes. J. Feline Med. Surg. 2008, 10, 213–218. [CrossRef]
18. Smith, J.S.; Viall, A.K.; Breuer, R.M.; Walton, R.A.; Plummer, P.J.; Griffith, R.W.; Kreuder, A.J. Preliminary Investigation of Bovine Whole Blood
  Xenotransfusion as a Therapeutic Modality for the Treatment of Anemia in Goats. Front. Vet. Sci. 2021, 8, 637988. [CrossRef] [PubMed]
19. Davidow, E.B.; Blois, S.L.; Goy-Thollot, I.; Harris, L.; Humm, K.; Musulin, S.; Nash, K.J.; Odunayo, A.; Sharp, C.R.; Spada, E.; et al. Association of Veterinary Hematology and Transfusion Medicine (AVHTM) Transfusion Reaction Small Animal Consensus Statement (TRACS). Part 1:
  Definitions and clinical signs. J. Vet. Emerg. Crit. Care 2021, 31, 141–166. [CrossRef] [PubMed]
20. Barrot, A.C.; Buttin, R.; Linsart, A.; Bachy, V.; Guidetti, M.; Blais, M.C. Frequency of feline blood types in non-pedigree cats in France. Rev.
  Med. Vet. 2017, 168, 235–240.
21. Martony, M.E.; Krause, K.J.; Weldy, S.H.; Simpson, S.A. Xenotransfusion in an Island Fox (Urocyon Littoralis Clementae) Using Blood from a
  Domestic Dog (Canis Lupus Familiaris). J. Zoo Wildl. Med. 2016, 47, 923–926. [CrossRef] [PubMed]
22. Buck, R.K.; Stegmann, G.F.; Poore, L.A.; Shaik, T.; Gray, T.; Zeiler, G.E. Xenotransfusion with packed bovine red blood cells to a wildebeest
  calf (Connochaetes taurinus). J. S. Afr. Vet. Assoc. 2018, 89, e1–e6. [CrossRef]
23. Charpentier, T.; Petit, T.; Guidetti, M.; Goy-Thollot, I. The dog erythrocyte antigen 1 blood group in nondomesticated canids and
  compatibility testing between domestic dog and nondomesticated canid blood. J. Vet. Intern. Med. 2020, 34, 2365–2373. [CrossRef]
  [PubMed]
24. Pignon, C.; Donnelly, T.M.; Todeschini, C.; Deschamps, J.Y.; Roux, F.A. Assessment of a blood preservation protocol for use in ferrets before transfusion. Vet. Rec. 2014, 174, 277. [CrossRef]
25. Bell, A.L.; Gladden, J.N.; Graham, J.E. Successful xenotransfusion in a domestic ferret with spontaneous hemoperitoneum using feline packed red blood cells. J. Vet. Emerg. Crit. Care 2020, 30, 336–341. [CrossRef]
  Blasi Brugue, C.; Ferreira, R.R.F.; Mesa Sanchez, I.; Graca, R.M.C.; Cardoso, I.M.; de Matos, A.J.F.; Ruiz de Gopegui, R. In vitro quality control analysis after processing and during storage of feline packed red blood cells units. BMC Vet. Res. 2018, 14, 141. [CrossRef] [PubMed]
  Barfield, D.; Adamantos, S. Feline blood transfusions: A pinker shade of pale. J. Feline Med. Surg. 2011, 13, 11–23. [CrossRef] [PubMed]
  McDevitt, R.I.; Ruaux, C.G.; Baltzer, W.I. Influence of transfusion technique on survival of autologous red blood cells in the dog. J. Vet. Emerg. Crit. Care 2011, 21, 209–216. [CrossRef] [PubMed]
  Roux, F.A.; Sai, P.; Deschamps, J.Y. Some ethical issues regarding xenotransfusion. Xenotransplantation 2007, 14, 217–221. [CrossRef]
  Levy, J.K.; Crawford, P.C.; Tucker, S.J. Performance of 4 Point-of-Care Screening Tests for Feline Leukemia Virus and Feline
  Immunodeficiency Virus. J. Vet. Intern. Med. 2017, 31, 521–526. [CrossRef] [PubMed]
  Madewell, B.R.; Jarrett, O. Recovery of feline leukaemia virus from non-viraemic cats. Vet. Rec. 1983, 112, 339–342. [CrossRef]
  [PubMed]
  Hofmann-Lehmann, R.; Huder, J.B.; Gruber, S.; Boretti, F.; Sigrist, B.; Lutz, H. Feline leukaemia provirus load during the course of
  experimental infection and in naturally infected cats. J. Gen. Virol. 2001, 82, 1589–1596. [CrossRef] [PubMed]
  Englert, T.; Lutz, H.; Sauter-Louis, C.; Hartmann, K. Survey of the feline leukemia virus infection status of cats in Southern Germany. J.
  Feline Med. Surg. 2012, 14, 392–398. [CrossRef] [PubMed]
  Rojko, J.L.; Hoover, E.A.; Quackenbush, S.L.; Olsen, R.G. Reactivation of latent feline leukaemia virus infection. Nature 1982, 298,
  385–388. [CrossRef] [PubMed]
  Helfer-Hungerbuehler, A.K.; Cattori, V.; Boretti, F.S.; Ossent, P.; Grest, P.; Reinacher, M.; Henrich, M.; Bauer, E.; Bauer-Pham, K.; Niederer,
  E.; et al. Dominance of highly divergent feline leukemia virus A progeny variants in a cat with recurrent viremia and fatal lymphoma.
  Retrovirology 2010, 7, 14. [CrossRef] [PubMed]
  Helfer-Hungerbuehler, A.K.; Widmer, S.; Kessler, Y.; Riond, B.; Boretti, F.S.; Grest, P.; Lutz, H.; Hofmann-Lehmann, R. Long-term follow up of
  feline leukemia virus infection and characterization of viral RNA loads using molecular methods in tissues of cats with different infection
  outcomes. Virus Res. 2015, 197, 137–150. [CrossRef]
  Nesina, S.; Katrin Helfer-Hungerbuehler, A.; Riond, B.; Boretti, F.S.; Willi, B.; Meli, M.L.; Grest, P.; Hofmann-Lehmann, R. Retroviral DNA—
  The silent winner: Blood transfusion containing latent feline leukemia provirus causes infection and disease in naive recipient cats.
  Retrovirology 2015, 12, 105. [CrossRef]
  Marenzoni, M.L.; Lauzi, S.; Miglio, A.; Coletti, M.; Arbia, A.; Paltrinieri, S.; Antognoni, M.T. Comparison of three blood transfusion guidelines
  applied to 31 feline donors to minimise the risk of transfusion-transmissible infections. J. Feline Med. Surg. 2018, 20, 663–673. [CrossRef]
  Mesa-Sanchez, I.; Ferreira, R.R.F.; Cardoso, I.; Morais, M.; Flaminio, M.; Vieira, S.; de Gopegui, R.R.; de Matos, A.J.F. Transfusion transmissible pathogens are prevalent in healthy cats eligible to become blood donors. J. Small Anim. Pract. 2021, 62, 107–113.
  [CrossRef]

Köpekten Kediye Ksenotransfüzyon: Acil Durumlarda Kedi Transfüzyonu için İlk Tercihimiz Köpek Kanı Olabilir mi?

Jack-Yves Deschamps * , Nour Abboud ve Françoise A. Roux

İletişim

Hizmetlerimiz

Hizmet Tarifesi

Onkolojik Danışmanlık

Evreleme

Patoloji

İleri Görüntüleme

Kanser Cerrahisi

Kemoterapi

Elektrokemoterapi

Radyoterapi

Diğer Hizmetler

Welcome Back!

Retrieve your password

Add New Playlist